CE-SDS'de Kararlılığı Gösteren Özellikler – Farmasötik Analiz İçin Kapiller Elektroforez Yöntemleri – Ayırma Teknolojisi – FARMASÖTİK ANALİZ – Kimya Mühendisliği – Ayırma Teknolojisi Ödevleri – Kimya Mühendisliği Ödev Yaptırma – Kimya Ödev Yaptırma Ücretleri
Düzeltilmiş tepe alan yüzdesi değerleri Tablo 2'de gösterilmektedir. 20 ila 40 saniyelik bir enjeksiyon süresi kullanıldığında, tahlil makul bir hassasiyet oluşturmuştur. Genel yüzde bağıl standart sapma (% RSD), HC, LC ve ana olmayan türler için sırasıyla 0.7, 1.6 ve 7.6'dır. HMW türlerinin% RSD'si, HMW ve HC zirveleri arasındaki zayıf çözünürlük nedeniyle nispeten yüksektir. Bu durumda, entegrasyon için net bir grafik vadi noktası olmadıkça HMW türlerinin HC bileşeninden ayrı olarak entegre edilmemesini öneririz. (b) Örnek Konsantrasyon Doğrusallığı: Numune konsantrasyonunun doğrusallığı, aynı zamanda, -5 kV'luk sabit bir enjeksiyon voltajı ve 25 saniyelik enjeksiyon süresinde de değerlendirilmiştir. Şekil 9, doğrusallık çalışmasından elde edilen e-gramları göstermektedir. Düzeltilmiş tepe alanı, her bileşen için antikor konsantrasyonuna karşı grafiklendirildi ve sonuçlar Şekil 10'da gösterildi. Her bileşen (HC, LC ve ana olmayan) için% düzeltilmiş tepe alanları, geniş bir protein konsantrasyonu aralığında doğrusaldır. belirleme katsayısı (R2) değerleri 0,99'dan büyüktür. HC, LC ve ana olmayan türler için% düzeltilmiş tepe alanları, protein numunesi konsantrasyonlarına göre grafiklendirildi ve Şekil 11'de gösterildi. Düzeltilmiş% düzeltilmiş tepe alanı değerleri Tablo 3'te gösterilmektedir. Bu sonuçlar, tahlilin numune için doğrusal olduğunu göstermektedir 0.5 mg / mL'nin üzerindeki konsantrasyonlar (Tablo 3) ve tahlilin, HC, LC ve ana olmayan türler için sırasıyla% 0.8, 1.0 ve% 11.7'lik toplam% RSD ile üç bileşenin tümünü ölçebildiği. Önerilen nihai protein konsantrasyonu 1 mg / mL'dir. (c) Aralık ve LOD / LOQ: CE-SDS yönteminin aralığı, her bir protein molekülüne bağlıdır. Genel olarak yöntem, hem UV / PDA hem de lazerle indüklenen floresan (LIF) yöntemleri için 0.5 ila 2.0 mg / mL arasında doğrusaldır.11,19 Bununla birlikte, SDS dikkate alındığında, 3.0 mg / mL'ye kadar yüksek protein konsantrasyonları protein ölçümü için kullanılabilir. protein oranı gerekli, yüksek protein konsantrasyonları tavsiye edilmez. LOD / LOQ değerleri UV / PDA ile LIF algılaması için farklıdır. 5-karboksitetrametilrhodamin süksinimidil ester (5-TAMRA-SE) ve 3- (2-furoil) -kinolin-2-karboksaldehit (FQCA) etiketli protein ile LIF tespiti için, bildirilen LOD% 0.0120.05'tir (w / w). 11,19 UV / PDA saptaması için, LOD genellikle ~% 0,320,5 (w / w) LOQ ile% 0,1 (w / w) 'dir. (d) Tekrarlanabilirlik / Kesinlik / Orta Hassasiyet: Azaltılmış CE-SDS yönteminin kesinliği, tekrarlanabilirlik (intra-assay) ve ara kesinlik (inter-assay) çalışmaları ile çalışıldı. Şekil 12, analiz içi tekrarlanabilirlik verilerinin elektroferogramını gösterir ve Tablo 4, testin kesinliğini gösterir (sırasıyla, HC, LC ve ana olmayan türler için% 0,3, 0,6 ve% 3,7'lik RSD'ler). Malzeme Güvenlik Bilgi Formu örneği Malzeme Güvenlik Bilgi Formu Nedir Malzeme Güvenlik Formu neden önemlidir Güvenlik bilgi formu Yönetmeliği MSDS örneği Malzeme Güvenlik bilgi formu hangi Bakanlık tarafından hazırlanır Msds neden önemlidir Mgbf standart maddeleri nelerdir (e) Tespit: İki tip dedektör değerlendirildi: UV / PDA ve LIF dedektörü. UV / PDA detektörünün kullanımı, florofor ile numune ön etiketleme türevlendirmesi gerekmediğinden nispeten basittir. Duyarlılık Coomassie mavi boyalı SDS-PAGE jel ile karşılaştırılabilir. LIF dedektörü ile, protein molekülünü bir florofor ile etiketleyerek hassasiyet önemli ölçüde artırılır. Ek olarak, temel gürültü önemli ölçüde azalır. Bununla birlikte, etiketleme prosedürü, numune hazırlamaya ek bir adım ekler. LIF tespitinin hassasiyeti, gümüş boyalı SDS-PAGE ile karşılaştırılabilir. Şekil 13, UV / PDA kullanan bir antikor için azaltılmış CE-SDS profilini LIF tespitine karşı karşılaştırır. Bu örnekte kullanılan floresan etiket 5-TAMRA-SE idi.19 Bu sonuçlar, LIF detektörünün UV / PDA detektöründen çok daha yüksek hassasiyet sağladığını göstermektedir. LIF tespiti ile kullanım için bir başka floresan boya, 9211 3- (2-furoil) -kinolin-2-karboksaldehit (FQCA), CE-SDS yöntemi için yakın zamanda geliştirilmiştir. Florojenik bir boyadır. Örnek hazırlama, diğer geleneksel floresan etiketleme prosedürlerinden daha basittir ve testin gerçekleştirilmesi kolaydır. Üçüncü tip detektör, amino asitlerin doğal floresan özelliklerini kullanan dahili veya doğal floresan detektörüdür. Bu dedektörün hassasiyeti UV / PDA ve LIF tespiti arasındadır. Bu tekniğin ön etiketlemeye göre avantajı, ön etiketleme adımının gerekli olmamasıdır; bu nedenle numune hazırlama nispeten basittir ve hassasiyet UV / LIF'e göre geliştirilir. Bununla birlikte, içsel floresan tespiti, Triptofan (Try), Tirozin (Tyr), Fenilalanin (Phe), 12'nin varlığına dayanır ve bu dedektör ticari olarak satışa sunulmuştur. (f) Özgüllük: CE-SDS yöntemi, genellikle 10 ila ~ 2002300 kDa arasındaki proteinlere uygulanabilen boyut tabanlı bir ayırma tekniğidir. Özgüllük genellikle formülasyon tamponuna ve diğer olası kirletici proteinlere karşı test edilir. Genellikle, formülasyon tamponunun tahlil ile herhangi bir etkileşimi yoktur. Hidrodinamik boyutu 102200 kDa olan kirletici proteinler içeren numuneler için yöntem spesifik değildir. (g) Hassasiyet: Testin kesinliği günden güne, kapilerden kapilere, aletten cihaza için değerlendirildi ve sonuçlar Tablo 5'te gösterildi. CE-SDS'de Kararlılığı Gösteren Özellikler İndirgenmiş CE-SDS'nin stabilite gösteren bir yöntem olarak kullanılma yeteneği, dört haftaya kadar pH 4 ve 371C'de strese tabi tutulmuş bir antikor kullanılarak incelenmiştir. E-gramlar, zamanla artan ek piklerin üretildiğini gösterir ve bu da rCE-SDS'nin kararlılık gösteren bir yöntem olduğunu gösterir. CE Enstrüman Karşılaştırması (CE-SDS) ABD pazarında, ticari olarak temin edilebilen CE cihazlarının iki büyük markası vardır: Agilent (HP3D CE Sistemi) ve Beckman (PA 800). Agilent bir PDA dedektörü kullanırken, Beckman cihazı bir UV, PDA veya LIF dedektörü kullanır. CE-SDS için, Agilent ve Beckman'ın CE cihazlarını karşılaştırdık ve çok benzer performans sağlıyor gibi görünüyorlar. Şekil 15, hem bir Agilent (Panel A) hem de bir Beckman aleti (Panel B) kullanılarak analiz edilen bir antikorun e-gramını göstermektedir. Beckman’ın eski model MDQ'su, jel tamponunun viskozitesinin neden olduğu temel stabilite sorunları ve ayrıca diğer enstrümantasyon nedenleri (veriler gösterilmemiştir) nedeniyle CE-SDS analizi için uygun değildir. CE-SDS Jel Tampon Karşılaştırması Beckman ve Bio-Rad adlı iki farklı satıcı tarafından üretilen CE-SDS jel tamponları karşılaştırıldı. Sonuçlar Şekil 16'da gösterilmektedir. Beckman SDS jel tamponu, Bio-Rad jel tamponundan daha iyi çözünürlük gösterdi.

Yağ ve Biyopolimerlerin Ekstraksiyonu – Ayırma Teknolojisi – Katı Sıvı Ayırma Teknolojisi – Kimya Mühendisliği – Ayırma Teknolojisi Ödevleri – Kimya Mühendisliği Ödev Yaptırma – Kimya Ödev Yaptırma Ücretleri

Deneysel Malzemeler

İyonik sıvı [C2C2im] [OAc], BASF’den (Ludwigshafen, Almanya) satın alındı. 270 polimerizasyon derecesine sahip PEG-300, standart sandal ağacı yağı, dekan, farnesol ve mikrokristalin selüloz (MCC) Sigma-Aldrich Inc.’den (Milwaukee, WI) satın alındı. Indulin AT (kraft hamurlaştırma işleminden elde edilen lignin) MeadWestvaco Corporation (Glen Allen, VA) tarafından sağlandı.

Root Vanuatu Premium Sandalwood, Seaman Timber Co.’dan (Montevallo, AL) alındı ​​ve çözülmeden önce sandal ağacı, partikül boyutları 0.25 mm’den küçük olan toz haline getirildi ve bir fırında (Precision Econotherm Laboratory Oven, Natick, MA) 90 ıC. Asidik polioksometalat (POM), H5 [PV2Mo10O40], Japan New Metals Co. (Akita, Japonya) tarafından bağışlanmıştır. Dietil eter, EMD Chemicals, Inc. (Gibbstown, NJ) tarafından sağlandı.

Döteryumlanmış kloroform (CDCl3), Cambridge Isotope Laboratories, Inc.’den (Andover, MA) satın alındı. Deiyonize (DI) su, ticari bir deiyonizerden (Culligan, Northbrook, IL) 25 ° C’de 16.82 M􏰬 cm özgül dirençle elde edildi. HPLC dereceli metanol, Fisher Scientific’ten (Pittsburgh, PA) alınmıştır. Diğer tüm çözücüler ve reaktifler, örneğin aseton Sigma-Aldrich’ten (St. Louis, MO) elde edildi ve alındığı gibi kullanıldı.

Sandal Ağacının Çözünmesi ve Yağ ve Biyopolimerlerin Ekstraksiyonu

AnILwitha erime noktası 30 ° C olan [21] ,andalwoodinin [C2C2im] [OAc] çözündürülmesi, Güney sarıçamının IL’de [15] çözünmesi üzerine önceki çalışmamızı takip etmiştir. Kısaca, 50 mL’lik alüminyum folyo kaplı bir beherde 20.0 g IL’ye (katı halde) 1.0 g sandal ağacı ilave edildi ve karışım 6 saat önceden belli bir sıcaklığa (100 veya 170 ° C) ısıtılmış bir yağ banyosuna kondu. veya 24 saat kuvvetli manyetik karıştırmaya tabi tutulur.

Çözüldükten sonra sandal ağacı / IL solüsyonu oda sıcaklığına soğutuldu ve [C2C2im] [OAc] ile bir bifaz oluşturabilen 20 mL dietil eter, sürekli karıştırılarak IL solüsyonundan yağı ekstrakte etmek için karışıma eklendi. 1 saat oda sıcaklığı. 1 saat bekletildikten sonra iki fazlı bir sistem oluşturuldu.

Üst dietil eter fazı, bir pipet kullanılarak IL fazından ayrıldı ve IL fazı, tüm yağın çıkarıldığından emin olmak için iki kez daha dietil eterle ekstrakte edildi. Dietil eter solüsyonları birleştirildi ve oda sıcaklığında dietil eteri buharlaştırmak için solüsyonun havaya maruz bırakılmasıyla sandal ağacı yağı elde edildi.

Sandal ağacı / [C2C2im] [OAc] solüsyonundan yağın ekstraksiyonundan sonra, kalan odun / IL solüsyonu, çözünmemiş odun kalıntısının uzaklaştırılması için filtrasyona tabi tutuldu. Homojen IL çözeltisindeki biyopolimerler (örn. Selüloz, lignin) önceki prosedürümüze göre geri kazanıldı.

Kısaca, IL çözeltisi, 200 mL 1: 1 (v / v) aseton / su karışımı içeren 300 mL’lik bir behere döküldü ve 1 saat boyunca oda sıcaklığında karıştırıldıktan sonra santrifüjlendi. Süpernatan, lignin geri kazanımı için 500 mL’lik bir behere aktarıldı.

Çöken karbonhidrat bakımından zengin malzeme (CRM) ayrıca bir aseton / su (1: 1 v / v) karışımı ile iki kez daha yıkandı ve ardından tüm lignin ve IL’nin malzemeyi vakuma tabi tutmadan önce yıkandığından emin olmak için DI su ile yıkandı. naylon filtre kağıdı (20 µm) içeren bir seramik huni kullanarak filtrasyon yapılır.

Linyin süpernatanttan çökeltildi ve malzeme oda sıcaklığında karıştırılırken asetonun buharlaşmasına izin verilerek kombine yıkama solüsyonları elde edildi. Geri kazanılan lignin, yukarıdaki gibi vakumla süzülerek kalan sulu IL çözeltisinden ayrıldı, ancak daha küçük lignin partikül boyutu nedeniyle 0.8 um naylon filtre kağıdı kullanıldı. Linyin ve CRM, 90 ° C’de bir fırında (Precision Econotherm Laboratory Oven, Natick, MA) gece boyunca kurutuldu.

Ekstraksiyon
Ekstraksiyon ile yağ eldesi
Ekstraksiyon Nedir
Kekik yağı ekstraksiyonu
Yağ ekstraksiyonu nedir
Soxhlet cihazı çalışma prensibi
Sentetik biyopolimerler
Sıvı-sıvı ekstraksiyon

Mikrodalga Destekli Ön İşlem

Yağ ekstraksiyonunu kolaylaştırmak için sandal ağacı / IL solüsyonunun ön muamelesi için mikrodalga ışıması kullanıldı. Yukarıdaki gibi hazırlanan sandal ağacı ve IL karışımı, ev tipi bir mikrodalga fırında (SHARP Carousel R-209KK, Mahwah, NJ) tam güçte (800 W) 3 s’lik (toplam 2 dakika) 40 darbe aldı. ca. için cam çubuk. Darbeler arasında 20 sn. (Dikkat: Mikrodalga ısıtma kullanılırken dikkatli olunmalıdır çünkü IL’ler iyi mikrodalga emicilerdir ve ısıtma hızla gerçekleşir, bu da kolayca IL’lerin ve biyopolimerlerin bozulmasına ve hatta patlamalara yol açabilir.) Mikrodalgada önceden işlenmiş sandal ağacı / [C2C2im] [OAc] solüsyonu daha sonra bir yağ banyosunda ısıtıldı ve yağ ekstraksiyonu yukarıda açıklanan prosedürü izledi.

Sandal ağacının polietilen glikol ile ön işlemden geçirilmesi

Ekstre verimini arttırmak için sandal ağacı, oda sıcaklığında 24 saat 5 g PEG-300 içinde 1 g sandal ağacının şişirilmesiyle ön işleme tabi tutuldu. Daha sonra sandal ağacı / PEG-300 karışımına yirmi gram [C2C2im] [OAc] ilave edildi ve elde edilen karışımlar, yukarıda belirtilen yağ banyosu ısıtma veya mikrodalga ısıtma yöntemleriyle işlendi, ardından yağ ekstraksiyonu yapıldı.

Karakterizasyon

Taze ve geri kazanılan [C2C2im] [OAc], ekstrakte edilen san- dalağacı yağı ve ticari sandal ağacı yağının 1H NMR spektrumları, numuneler CDCl3’te çözülerek 25 ° C’de Bruker Avance 500 NMR spektrometre kullanılarak toplandı. Öğütülmüş sandal ağacı, yenilenmiş CRM, MCC, Indulin AT ve çökeltilmiş lignin, 2 cm􏰵1 çözünürlükte 24 taramalı zayıflatılmış toplam yansıma (ATR) hücresi ile donatılmış bir PerkinElmer Spectrum 100 FTIR spektrometresi kullanılarak FTIR spektroskopisi ile karakterize edildi.

Çıkarılan yağın GC-MS analizi, bir Micromass AutoSpec-UltimaTM NT Kütle spektrometresine bağlı bir Rtx-Wax kolon (30 m uzunluk 􏰯 250 m id 􏰯 0,5 µm film kalınlığı) ile donatılmış bir HP 6890 GC serisi kullanılarak gerçekleştirilmiştir. 70 eV’de çalışan elektron iyonizasyon (EI) modu. İlk fırın sıcaklığı 40 ıC idi ve 2 ıC / dk hızla 200 ıC’ye çıkarıldı.

Yağ numuneleri, HPLC dereceli metanol içinde çözüldü ve metanol çözeltisi, santalol için dahili standart olarak, 1:10 (v / v) oranında dekan ile karıştırıldı. 0,3 􏰫L yağ çözeltileri (10: 1 dekan / yağ metanol), 220 IC giriş sıcaklığında GC-MS sistemine (1:30 bölünmüş) enjekte edildi. Taşıyıcı gaz olarak helyum kullanıldı (1 mL min-1).

Seskiterpen alkollerin tanımlanması, MS spektrumlarının yayınlanmış verilerle karşılaştırılmasıyla sağlandı ve NIST standart kütle spektrometresi kitaplığı tarafından onaylandı. Kantifikasyon için kalibrasyon eğrisi, çeşitli mol oranlarında (1: 1, 1: 2, 1: 4 ve 1: 8) dekan ve farnesol karışımlarının analiz edilmesiyle elde edildi ve santalollerin GC’ye tepkisinin olduğu varsayıldı. saf ‘-santalol veya “-santalol ticari olarak mevcut olmadığından farnesol ile aynıydı.

Sandal ağacı yağının ana bileşenleri olan (Z) – ‘-santalol ve (Z) – “- santalol, aşağıdaki denkleme dayalı kalibrasyon eğrisi kullanılarak hesaplandı: y D 0.587x C 0.573 (R 2 D 0.994), burada x , farnesol / dekanın konsantrasyon oranıdır ve y, farnesol / dekanın kromatografik tepe alanı oranıdır.

Bir yanıt yazın