Dört renkli boyaların kullanılması, ürünlerin tek bir jel şeridinde çalıştırılabileceği anlamına gelir. Her boyanın ayrı ddNTPS'ye bağlanması, reaksiyonların tek bir tüpte gerçekleştirilebileceği anlamına da gelir. Plaka jeli veya dikey kapiler elektroforezi takiben floresan etiketli ürünleri tespit eden çok çeşitli otomatik sıralayıcılar da mevcuttur.
Ayrıca, tüm bu makineler, veriler otomatik olarak sıra bilgisine dönüştürüldüğünden, ham verilerin manuel analizi ihtiyacını ortadan kaldırarak verileri doğrudan bir bilgisayara aktarır.
Çoğu teknikte olduğu gibi, sıralama sorunsuz değildir. Belirsiz alel kombinasyonları en büyük problemdir. Bu, tüm lokuslarda olur ve iki alel, farklı bir alel çiftinin dizisiyle aynı olan bir heterozigot dizi ürettiğinde ortaya çıkar.
PCR ve sıralama primer tasarımında da sorunlar olabilir. Dizilemenin, daha önce tanımlanamayan alelleri tespit edeceği kadar, diğer DNA tiplemelerine göre bir avantaja sahip olduğu düşünülüyordu. Bu, yeni alel, PCR'nin veya dizileme primerlerinin 30 ucuna karşılık gelen konumlarda polimorfizmler içermediği sürece doğrudur.
Ek olarak, diziye dayalı tipleme, incelenen genin tamamını dizilemelidir, çünkü dizi ne kadar kısa olursa, yeni polimorfizmlerin gözden kaçma olasılığı o kadar artar. PCR ve sekanslama için çoklu primerlerin kullanılması, belirli bir alelin tercihli amplifikasyonu veya sekanslanması ile sonuçlanabilir.
Bu, homozigotluğun yanlış atanmasına yol açar. Sekansa dayalı tiplendirme teknikleri hala emek yoğundur ve pahalı ekipman ve reaktifler gerektirir. Tek başına bu, muhtemelen HLA laboratuvarları için bir ön hat tekniği olarak benimsenmesinin önündeki en büyük engeldir.
Ayrıca, diziye dayalı tipleme çok yüksek çözünürlüklü tipleme sağlamasına rağmen, bu tür yüksek çözünürlüklü HLA eşleşmesinin katı organ transplantasyonunda önemli olduğunu gösteren bir kanıt henüz yoktur. Ancak kemik iliği transplantasyonu için tablo farklıdır ve eşleşmenin sonucu etkilediğine dair net kanıtlar vardır.
Diseksiyon nedir
Mikrodiseksiyon nedir
Özet
MHC'nin hücre yüzeyi glikoproteinleri, transplant immünolojisinde merkezi bir rol oynar. MHC başlangıçta, T lenfositlerin aşılanmış doku üzerinde bulunan kendinden olmayan MHC antijenlerine karşı güçlü reddetme tepkisi nedeniyle transplantasyonun önündeki ana engel olarak belirlendi.
İnsan MHC'sinin HLA proteinleri, bilinen en polimorfikler arasındadır, bu nedenle, aynı HLA alellerini ifade eden ilgisiz iki bireyin olasılığı çok küçüktür. T hücresi antijen tanıma MHC polimorfizminden derinden etkilendiğinden, transplant donörlerinin ve potansiyel alıcıların HLA proteinleri tanımlanmalı ve greft kaybı riskini reddetme riskini en aza indirmek için mümkün olan en yakın eşleşme aranmalıdır.
'Doku tipleme' olarak adlandırılan HLA tanımlama tekniği, gerçekten de klinik tıpta kadavra transplantasyon programlarında donörü alıcıya eşleştirmek için kullanılır, ancak MHC'nin alerjik ve otoimmün koşullara duyarlılığı belirlemedeki rolünü incelemek için de kullanılabilir. .
İnsanlarda MHC genotiplemesi başlangıçta karışık lenfosit reaksiyonu ve ardından seroloji ile gerçekleştirilmiştir. Doğal metodolojik kısıtlamalar nedeniyle, bu yöntemlerin yerini genetik ekspresyon düzeyinde analiz eden teknikler almıştır. MHC sınıf II bölgesinin -DR ve -DQ genleri, DNA-RFLP ile HLA-tipi olan ilk genlerdir.
Bu tekniğin yerini büyük ölçüde daha hızlı ve daha hızlı PCR tabanlı yöntemler almıştır. MHC'nin moleküler klonlanması ve haritalanması, hem sınıf I hem de sınıf II bölgelerinin antijenlerini tipleyen yeni bir PCR tabanlı tekniğin yakın zamanda geliştirilmesine yol açmıştır. Bu tekniği kullanarak, HLA genotiplemesi, tek bir Polaroid fotoğrafından elde edilebilen sonuçlarla, çoklu PCR ve tek bir jel kullanılarak tek bir numune üzerinde gerçekleştirilebilir.
Bu sistem histo-uyumluluk testi laboratuvarlarının çoğunda önceki tüm serolojik/moleküler tabanlı HLA tipleme prosedürlerinin yerini almıştır veya değiştirmektedir. Sekansa dayalı DNA teknikleri, kemik iliği transplantasyonu ortamında yaygın olarak kullanılan yüksek çözünürlüklü bir tipleme yöntemi sağlar.
MOLEKÜLER PATOLOJİ
Lazer Yakalama Mikrodiseksiyon
Moleküler teknolojilerdeki son gelişmeler genomik, transkriptomik ve proteomik çalışmalarında devrim yarattı. Bununla birlikte, bu teknolojilerin uygulanmasındaki ciddi bir potansiyel dezavantaj, cerrahi olarak rezeke edilen dokuların doğal heterojenliğidir.
Girdi materyalinde gereksinim fazlası olan hücre popülasyonları bulunmadıkça, sonraki analizin bozulmasına neden olarak hatalı sonuçlar üretilebilir. Doku kesitlerinin ve sitolojik preparatların lazer mikrodisseksiyonu, saf hücre popülasyonlarının elde edilmesini kolaylaştırmak ve doku karmaşıklığı engelinin üstesinden gelmek için değerli bir yukarı akış kaynağıdır. Geçerli ve anlamlı sonuçlar üretmek için çeşitli alt moleküler teknolojilerle birleştirilebilir.
Lazer yakalama mikrodisseksiyon (LCM), orijinal olarak Ulusal Kanser Enstitüsünde geliştirilen bir tekniktir. Başlangıcından bu yana bir dizi modifikasyon yapıldı ve şu anda lazer tipine [kızılötesi (IR) veya ultraviyole (UV) bağlı olarak esas olarak iki kategoriye ayrılan bir dizi alet mevcut. ] istihdam edildi.
LCM, dondurulmuştan sabit parafine gömülü kesitlere veya sitolojik preparasyonlara kadar çeşitli doku preparasyonlarına uygulanabilir. Hematoksilen ve eozin veya toluidin mavisi kullanılarak yapılan rutin boyama, genellikle ilgilenilen hücre tipinin morfolojik tanımlanmasına yardımcı olmak ve bir doku kesiti etrafında gezinmeyi kolaylaştırmak için kullanılır. Bununla birlikte, fenotipik ve fonksiyonel özelliklere göre hücre seçimine izin vermek için histokimyasal boyama, immünohistokimya veya immünofloresan da kullanılabilir.
Başlangıç materyaline ve seçilen aşağı akış protokollerinin gereksinimlerine bağlı olarak, DNA, mRNA veya protein çıkarılabilir ve başarılı bir şekilde analiz edilebilir. Bu şekilde, hastalığın hücreye özgü biyobelirteçlerinin veya potansiyel terapötik hedeflerin tanımlanması doğru bir şekilde gerçekleştirilebilir.
Bu teknolojinin özellikle yararlı olduğu alanlardan biri kanser araştırmalarıdır. Kanser araştırmacıları için büyük bir engel, premalign hücrelerin malign bir tümör oluşturmak üzere ilerlediği kanserin ilerlemesi sırasında ortaya çıkan moleküler değişiklikleri karakterize etmenin zorluğunda yatmaktadır.
Erken kanser tespitine yardımcı olabilecek tümör ilerlemesi sırasında yukarı veya aşağı regüle edilen proteinlerin tanımlanması, bu proteinlerin bulunduğu küçük hücre alt popülasyonu tarafından engellenir. Lazer yakalama mikrodiseksiyon (LCM), araştırmacıların lekeli doku bölümlerinden farklı alt popülasyonları izole ederek normal ile hastalıklı hücreleri karşılaştırmasına olanak tanır.
A. Dökme Plak Tekniği
1. Kaynar su banyosuna bir tüp steril besleyici agar yerleştirin. (Basit bir su banyosu, bir cam beher veya yarı dolu teneke kutuyu bir Bunsen alevi üzerine bir tripod üzerine yerleştirerek kurulabilir. Cam kapların altında bir asbest matı kullanılmalıdır. Su sabit bir yerde tutulmalı, ancak hızlı olmamalıdır. Kaynatın. Su seviyesini yarım işarette tutun. Bunun yerine elektrikli brülör kullanılabilir.)
2. Agar sıvılaştırıldığında, tüpü çıkarın ve yaklaşık 50 ° C’ye soğumaya bırakın.
3. Üst tarafı yukarı bakacak şekilde önünüze boş bir steril petri kabı yerleştirin.
4. Parmaklarınızı tıkalı ağız ucunda tutarak 1 ml’lik steril bir pipeti kabından çıkarın.
5. Diğer yandan karışık et suyu kültürünü alın, pipeti tutan elin küçük parmağıyla kapağını çıkarın (pipete hiçbir şeye dokunmayın) ve pipeti et suyuna yerleştirin.
6. Tüpü ve pipeti dikey olarak tutarak işaret parmağınızı pipet ağzının üzerine koyun. Pipetin tüpteki et suyu seviyesine kadar dolmasına izin verin ve ardından parmağınızla ağzını kapatın (pipette yaklaşık 0,3 ila 0,4 ml kültür olmalıdır).
7. Parmağınızı üst kısmı üzerinde basılı tutarak pipeti ucu et suyundan kurtulana kadar kaldırın ve ardından pipetteki materyalin yalnızca son 0,1 ml kalana kadar tüpe geri dönmesine izin verin. Şimdi pipetin ağzını kapatmak ve daha fazla damlamasını önlemek için parmağınızı sıkıca bastırın (şek. 10.1). Bir pipete sıvı çekmek için asla ağzınızı kullanmayın.
8. Pipeti tüpten çekmeden önce, pipetten sarkan damlayı çıkarmak için ucunu kuru iç duvara dokundurun.
9. Kapalı pipeti geri çekin, tüp kapağını değiştirin ve tüpü rafa koyun.
10. Şimdi, serbest elinizle petri kabının üst kısmını çıkarın (yere koymayın), pipetin ucunu yemeğin dibinde, parmağınızı ağızdan ayırın ve 0.1 ml et suyu kültürünün plak dibine akmasına izin verin.
11. Tabağı yerine koyun ve pipeti bir dezenfektan kabına atın.
12. Erimiş, soğutulmuş agar tüpünü alın, kapağını çıkarın ve tezgahın üstüne koyun.
13. Serbest elinizle petri kabının üst kısmını çıkarın (tekrar yere koymayın). Agarı hızla tabağa dökün.
14. Petri kabı kapağını yerine takın (tüp yıkama için ayrılabilir). Kapalı çanağı yavaşça sallayın veya dairesel şekilde döndürün.
Hala erimiş olan agarın alt yarının kenarından yukarı doğru dalgalanmasına izin vermemeye dikkat ederek tezgah üstünde moda edin.
15. Agarın daha fazla rahatsız edilmeden katılaşmasına izin verin. Sertleştiğinde (yaklaşık 30 dakika), plakayı ters çevirin ve tepsiye yerleştirin. (35 ° C inkübatör)
Dökme plak Yöntemi nedir
Dökme plak yöntemiyle kültürel sayım
Dökme plak Yöntemi basamakları
Dökme Plak nedir
Dökme plak yöntemi avantajları
Mikrobiyoloji dökme plak yöntemi
Mikrobiyolojik sayım yöntemleri
En Muhtemel Sayı yöntemi
B.Alt Kültür Tekniği (Saf Kültür için İzole Kolonilerin Toplanması)
1. Uygulama2’deki şekle tekrar bakın2. Şekil, çizgili bir plakanın yüzeyinden kolonyayı seçme yönteminin doğru olduğunu gösterir.
2. Şimdi, Egzersiz 9’da eklediğiniz besleyici agar plakasını üç organizma içeren karışık bir broth kültüründen açın. Ayrı ayrı izole kolonilerin tüm yönlerini görebilmeniz için, açıkta kalan agar yüzeyini iyi ışıkta tutun.
3. Sterilize edilmiş, soğutulmuş özenizi diğer elinizde sabit tutarak, özün kenarını saf alt kültür için seçtiğiniz izole edilmiş bir koloninin üst yüzeyine doğru getirin. Yüklü döngüyü geri çekin (hiçbir şeye dokunmayın!) Ve çizgili plakayı kapatın.
4. Yüklü özeyi, sıvı yüzeyinin hemen altında tüpün iç duvarına nazikçe sürterek taze, steril bir besiyerini inoküle edin. Döngüyü tüpten çıkardığınızda, et suyunun bir kısmını içerdiğinden emin olun.
5. Şimdi, taze bir besleyici agar plakasını inoküle etmek için özeyi kullanın. İnokülumu kenara yakın küçük bir alana sürün, özeyi sterilize edin ve sonra geri dönün ve şekil 9.1’de gösterilen tekniği kullanarak plağın sürme işlemini tamamlayın.
6. Her biri önceki plaka kültürünüzden alınan farklı türde bir koloni içeren iki agar plakasını daha da aşılayın.
7. Yeni plaka kültürlerinizi (ters çevrilmiş) ve broth kültürlerinizi 35 ° C’de inkübe edin.
Sonuçlar
A. Dökme Plakasının İncelenmesi
Dökme plaka kültürünüzde görebileceğiniz kolonilerin dağılımını çizin (yüzey ve alt yüzey konumları, ayırma). Tanıdığınız her türlü kolonyal ayrımları belirtin.
B. Çizgili Plaka Alt Kültürlerinin İncelenmesi
1. Eklenmiş besleyici agar plak alt kültürlerinizi inceleyin ve saf kültürler alıp almadığınızı belirleyin. Aşağıdaki tabloda, her plakadaki kolonilerin boyutunu, şeklini ve pigmentasyonunu belirtin. Her bir alt kültür plakasında kolonilerin Gram boyamalarını yapın ve tabloya Gram boyama reaksiyonlarını kaydedin.
2. Besin suyu alt kültürlerinizi inceleyin. Saf olup olmadıklarını belirlemek için Gram boyaları yapın. Her bir et suyu alt kültürüne ilişkin mikroskobik gözlemlerinizi de açıklayın.
3. Tabak ve et suyu kültürlerinizde geri kazanılan organizmalar, orijinal olarak kaydettiklerinizle aynı mı?
Sorular
1. Klinik örneklerin kültürlenmesinde dökme ve sürme plakası tekniklerinin görece uygunluğunu tartışın.
2. Plaka kültürleri neden ters pozisyonda inkübe edilir?
3. Karışık bir floranın tabak kültüründen hangi kolonilerin seçilmesi gerektiğine nasıl karar verirsiniz?
4. Klinik örneklerden üretilmiş saf organizma alt kültürlerini yapmak neden gereklidir?
5. Bir kültürün veya alt kültürün saf olup olmadığını nasıl anlarsınız?
6. Ne tür klinik örnekler bakteri kültürlerinde karışık flora oluşturabilir?
7. Saf bir kültürde birden fazla koloni türü göründüğünde, yabancı organizmaların en olası kaynakları nelerdir?
Çevreden Mikroorganizmaların Kültüre Alınması
Mikroorganizmalar çevrenin her yerinde bulunur: havada ve suda; nesnelerin, giysilerin, masaların, yerlerin yüzeyinde; toprakta ve tozda; ve kendi vücudumuzun cilt ve mukozalarında vb.
Günlük yaşamımızda iyi hijyen sağladığımız sürece, yaygın olarak bulunan bu mikroorganizmalar normalde sağlıklı insanları ilgilendirmez. Bununla birlikte, yatkın hastaların hastane kaynaklı (nozokomiyal) enfeksiyonlardan korunması gereken hastanelerde, mikroorganizmaların ortamdaki konsantrasyonu ve dağılımı da büyük önem taşımaktadır.
Çevrenin sık sık izlenmesi, bir mikrobiyolog, hemşire veya doktor olabilecek hastane epidemiyoloğunun sorumluluklarından biridir.