Tromboelastogram
Trombosit fonksiyonuna daha fizyolojik ve global bir yaklaşım, bir tromboelastogram kullanılarak ölçülür. Tromboelastogram, sıcaklığa göre uyarlanmış pıhtılaşmayı, fibrinolitik faktörleri ve trombosit fonksiyonunu, pıhtının fiziksel özelliklerini ve gelişimi ve bozulması boyunca mekanik iş yapma kabiliyetini izleyerek ölçer.
CaCl2, 4 450’lik bir açıyla salınan, sıcaklık ayarlı (37 C) tek kullanımlık bir kapta sitratlı venöz kana eklenir. Yeniden kalsifikasyondan hemen sonra numuneye tek kullanımlık bir iğne yerleştirilir. Dönen kabın torku, fibrin trombosit bağlanması kap ve pimi birbirine bağladıktan sonra daldırılan pime iletilir.
Pimin hareketinin büyüklüğü, güçlü pıhtıların pimi doğrudan kap hareketiyle aynı fazda hareket ettirdiği bağlanma kuvvetine bağlıdır. Pıhtı geri çekildikçe veya çözüldükçe, bağlar kırılır ve fincan hareketinin aktarımı azalır. Fibrin ipliği oluşumuna kadar geçen süre, pıhtı oluşumunun kinetiği ve pıhtı çözünmesi hakkında bilgi sağlanır. Bu yaklaşım, pıhtılaşma durumunu izlemek için yoğun bakım ortamında giderek daha fazla kullanılmaktadır.
Bir Hastane Transfüzyon Servisi
Bir hastane kan nakli hizmeti, üç ana serolojik araştırma yürütür: (a) bir hastanın kan grubunu belirlemek; (b) hemolitik anemiyi indükleyenler de dahil olmak üzere düzensiz antikorları saptamak ve tanımlamak; (c) hastalara uyumlu kan bileşenleri sağlamak.
Kan grubu tanımlama
Transfüzyon serolojisine uygulanan laboratuvar yöntemleri, hizmetin birçok yönünü basitleştirme ve otomatikleştirmeye yönelik artan ihtiyacı karşılamak için hızla değişmektedir. Bununla birlikte, serolojinin ilkeleri aynı kalır.
Kırmızı hücre zarı üzerinde 100’den fazla tanınan antijen vardır ve bunların varlığı, karşılık gelen antikor veya antiseruma maruz kaldığında kırmızı hücrelerin aglütinasyonu ile belirlenebilir. Çoğu kan grubu antijeni doğal olarak oluşur ve antijene maruz kalma, antijeni olmayan bir kişide birincil antikor yanıtını uyarabilir.
Elde edilen alloantikor, o antijen için spesifiktir ve antijene daha fazla maruz kalma, önemli transfüzyon reaksiyonunu indükleme potansiyeli ile hızlı ve uzun süreli bir antikor yanıtını uyarabilir. Hızlı intravasküler hemoliz, antikorun (genellikle IgM) antijene bağlanmasını takip edebilir ve aktivasyonu tamamlayabilir.
Tromboelastogram cihazı
Tromboelastogram Nedir
Tromboelastografi nedir
Kollajen epinefrin yüksekliği nedir
Adp testi düşüklüğü nedir
Pfa-100 testi nedir
Adp testi nasıl yapılır
Trombosit fonksiyon testi nasıl yapılır
Bu, alıcının serumunda doğal olarak bulunan anti-A veya anti-B’nin uygun antijene maruz kalması durumunda ABO uyumsuzluğu ile sonuçlanır. Genellikle bir birey, polen veya bakteri gibi diğer biyolojik maddelerde bulunan aynı antijenin uyarılması nedeniyle kendi kırmızı hücrelerinde bulunmayan AB antijenlerine karşı doğal olarak oluşan antikorlar üretir.
Bu nedenle tek bir kan grubu, test kırmızı hücrelerine spesifik antiserumların eklenmesiyle doğrudan ve test serumlarına antijen spesifikliği bilinen kırmızı hücrelerin eklenmesiyle dolaylı olarak belirlenebilir. Bir hastanın kan grubunu belirlemek için kırmızı hücre antijenlerinin karakterizasyonu gerekir.
Rutin kan gruplaması için bu, A, B ve D antijenlerinin tanımlanmasını gerektirir. A antijenini hücrelerde eksprese eden kişiler, anti-A üretmezler, ancak anti-B üretebilirler. B antijeni eksprese eden kişiler normalde anti-B üretmezler, ancak anti-A üretebilirler, oysa O grubu A veya B antijenini eksprese etmez.
Tarihsel olarak, antijen tanımlaması, önceden tiplendirilmiş hastalardan elde edilen saflaştırılmış antikorlar kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Günümüzde, çoğu tipleme antikoru, kimyasal olarak modifiye edilmiş monoklonal antikorlardır. Kullanım kolaylığı için, ticari antikorlar, anti-A ve anti-B antikorlarına eklenen özel bir renkli boyaya sahiptir.
Bir hastanın kan grubunu kontrol etmenin dolaylı bir yöntemi, antikorları içeren bir hastanın serumunu, ters veya arka grup veren ABO özgüllüğü bilinen hücrelerle reaksiyona sokmaktır. Böylece, A grubu bir hastanın serumu B hücreleri ile reaksiyona girecek, B grubu hastaları A hücreleri ile reaksiyona girecek ve O grubu hastaları hem A hem de B hücreleri ile reaksiyona girecek.
Hem A hem de B antijenlerine sahip olan nadir hastalar, hiçbir hücre ile reaksiyona girmez. Düzensiz antikorlar için yapılan başka bir kontrol ve araştırmanın bir parçası, hastanın kan grubuna bakılmaksızın reaksiyona girmemesi gereken O grubu hücreleri içeren hastanın serumunu koymaktır.
Hastanın kendi hücreleri veya O hücreleri gibi uygun negatif kontrollerin dahil edilmesi önemlidir. Kontrol hücreleri, anti-A ve anti-B dışındaki numunedeki soğuk antikorlara bağlı reaksiyonları tanımlamak için gereklidir.
Al Yanaklı Sistem
Rhesus (Rh) sistemi, tanımlanması gereken ikinci en önemli kan grubu sistemidir. ABO sisteminin aksine, antijen yokluğunda antikorlar doğal olarak mevcut değildir; bununla birlikte, rhesus negatif (Rh ) bir alıcıda rhesus pozitif (Rhş ) hücrelerin maruz kalmasının ardından antikorlar kolayca oluşturulabilir.
Oluşan antikorlar genellikle IgG’dir ve plasenta bariyerini geçerek annenin Rh olduğu ve fetüsün Rh+ yenidoğanın hemolitik hastalığı (HDN) geliştirdiği ikinci veya sonraki gebeliklerle sonuçlanabilir.
Bu nedenle, doğurganlık çağındaki Rh dişilerinin D antijenine karşı duyarlılaşmasını önlemek için her türlü çabanın gösterilmesi önemlidir. Rhesus gruplaması, bir IgM monoklonal anti-D kullanılarak iki kopya halinde yapılmalıdır.
Pozitif ve negatif kontroller her test grubuna dahil edilmelidir ve sonuçlar tüplerin düşük hızda 1 dakika santrifüjlenmesinden sonra mikroskobik olarak okunmalıdır. Birleşik Krallık’ta, ulusal kılavuzlar iki farklı anti-D reaktifinin kullanılmasını önermektedir.
D antijeni, birçok farklı alt antijenden (epitop) oluşan karmaşık bir antijendir. Monoklonal antikorlar oldukça spesifiktir ve tek epitoplara tepki verebilir; bu nedenle, reaktifin reaksiyona girdiği belirli epitop eksikse, yanlış bir negatif sonuç olacaktır.
Bu sekiz reaktifi (anti-A, anti-B, anti-AB, anti-D, anti-D2, A hücreleri, B hücreleri ve O hücreleri) kullanarak ortak kan gruplarını belirlemek mümkündür.
Kan gruplandırma yöntemleri
Hastaları gruplamak için bu temel reaktifleri kullanan ve genel olarak beş kategoriye ayrılabilen birçok yöntem vardır: (a) 16°C’lik bir optimum sıcaklıkta yaklaşık 1 saat inkübasyon gerektiren, geliştirmesiz tek tek tüplere dayalı yöntemler; (b) genellikle santrifüjleme gerektiren ve yalnızca hücre tiplendirmesinde gerçekleştirilen geliştirmeli (hızlı gruplar) ayrı tüplerdeki yöntemler; (c) mikrotitre plakaları kullanan yöntemler; (d) bir katı faz matrisi kullanan yöntemler; (e) sürekli akış ilkelerine dayalı otomatik yöntemler.
Seçilen yöntem, yapılacak işin hacmine ve aciliyetine bağlıdır. Hızlı yöntemler genellikle geriye dönük kontrol olmaksızın yalnızca hastanın antijenlerini kontrol eder.
Sonuçların görselleştirilmesi, kullanılan yönteme bağlı olarak değişir. Tüp ve mikrotitre yöntemleri için, mikro veya makroskopik olarak yorumlanabilen kırmızı hücrelerin aglütinasyonuna bağlıdır. Mikrotitre ve hızlı grup metodolojileri makroskopik görselleştirme kullanma eğilimindeyken, geliştirilmiş olmayan yöntemler mikroskobik olarak okunma eğilimindedir.