Kromozom Analizi
Sitogenetikçi, tüm kromozom çiftlerinin tanınan normal bantlama paternini gösterdiği konusunda tatmin olursa, normal bir karyotip rapor edilebilir. Karyotipler, ISCN terminolojisi kullanılarak açıklanmıştır. Genel olarak, bu şu sıraya sahiptir: toplam kromozom sayısı, cinsiyet kromozomu yapısı, anormalliğin tanımı (varsa) ve bunların her biri virgülle ayrılır.
Böylece normal dişi karyotip formülü 46,XX ve normal erkek karyotipi 46,XY'dir. Bir kromozom anormalliği tespit edildiğinde, uygun karyotip formülü atanır. Her tür yapısal anormallik, ilişkili bir ISCN kısaltmasına sahiptir, örn. yer değiştirme için 't', ters çevirme için 'i' vb yer alır.
İlgili kromozomlar ve herhangi bir kesme noktası, atanan karyotipik formüle dahil edilir, örn. Şekil 36.10'da gösterilen anormal karyotip 46,XY,t(5;14)(p15.2;q24.1) formülüne sahiptir. Bu, kromozom 5'in p kolunda 15.2 bandında kırıldığını, kromozom 14'ün ise q kolunda bant 24.1'de kırıldığını gösterir.
Anormallik belirsizse veya mikroskobik inceleme ile kırılma noktaları net değilse, karyotiplerin hazırlanması, anormalliğin tam yapısını karakterize etmeye yardımcı olabilir. Eskiden bu, anormal hücrelerin fotomikroskopi kullanılarak fotoğraflanmasını, filmin geliştirilmesini, filmin basılmasını, kromozomların standart karyotip sırasına göre kesilmesini ve yeniden düzenlenmesini içeriyordu.
Günümüzde, tanısal sitogenetik laboratuvarlarında karyotip üretimi, özel görüntü analiz sistemleri kullanılarak önemli ölçüde kolaylaştırılmıştır. Bu sistemler, mikroskobu, analiz edilecek metafaz yayılımının dijital görüntüsünü yakalamak için kullanılan bir dijital kameraya bağlar.
Özelleştirilmiş sitogenetik yazılım daha sonra, çıktısı alınabilen ve/veya elektronik olarak saklanabilen nihai bir karyotip üretmek için bir bilgisayar ekranında kromozomların düzenlenmesini sağlar.
Genetik bozukluklar nelerdir
Sayısal kromozom anomalileri
Genetik bozukluk neden olur
Kalıtsal bozukluklar
Tedavisi olmayan genetik hastalıklar
Genetik bozukluk tedavisi
Kromozom anomalileri
Yapısal kromozom anomalileri
Edinilmiş Kromozom Anormallikleri İçin Kromozom Analizi
Malignitelerin (lösemiler ve katı tümörler) sitogenetik analizi, ilişkili edinilmiş kromozom anormalliklerini saptamak için rutin olarak gerçekleştirilir. Bu tür anormalliklerin tespiti, hastalık teşhisi, hasta prognozu ve tedaviye yanıtın izlenmesi ile ilgili hayati bilgiler sağlar.
Edinilmiş kromozom anormallikleri için kromozom analizi, yapısal analizden birkaç önemli farklılık taşır. Edinilmiş kromozom anormallikleri klonaldir ve sadece malign hücrelerle sınırlıdır. Ek olarak, malign hücrelerden elde edilen metafazlar, malign olmayan hücrelere kıyasla tipik olarak daha düşük morfoloji (kısa ve zayıf bantlar) gösterir.
İlk olarak, sitogenetik uzmanının küçük klonal anormalliklerin saptanmasını sağlamak için daha fazla sayıda hücreyi analiz etmesi önemlidir (yani, saptanan tüm hücreler anormal klona ait olmayabilir) ve ikinci olarak, önlemek için tüm metafazların temsili bir seçiminin incelenmesi önemlidir. Daha kaliteli fakat muhtemelen habis olmayan hücrelerin yanlışlıkla seçilmesi gerekir.
Moleküler Sitogenetik
Rutin tanısal sitogenetik alanındaki en son önemli gelişme, 1980'lerde moleküler sitogenetik tekniklerin tanıtılması olmuştur. Floresan in situhibridizasyon (FISH) tekniği ile insan karyotipinin belirli bölgelerini vurgulamak için kullanılabilecek çok çeşitli ticari olarak temin edilebilen problar mevcuttur.
FISH, herhangi bir bantlama tekniğinin sınırlarını aşan bazı çok ince anormalliklerin tespit edilmesini sağlar. FISH probları, bantlama teknikleri kullanılarak tespit edilen karmaşık veya tanımlanamayan kromozom anormalliklerini hızlı ve doğru bir şekilde karakterize etmek için de kullanılabilir.
Ayrıca, FISH probları, bölünen metafaz yayılımları mevcut olmasa bile, numunelerin önemli sitogenetik anormallikler açısından taranmasına olanak da tanır.
Amniyotik sıvı örnekleri, kromozom preparatları üretmek için kültürde yeterli hücrenin büyümesini 2 haftaya kadar beklemek yerine 24 saat sonra FISH tarafından belirli anormallikler için taranabildiğinden, bu hızlı doğum öncesi tanıyı mümkün kılmıştır. FISH, mitotik hücrelerin elde edilmesinin zor olabileceği malignite çalışmalarında da özellikle de yararlıdır.
Tüm rutin tanısal sitogenetik laboratuvarları, rutin bantlama yöntemlerini tamamlayan bu FISH testlerine artık çok fazla güveniyor. Birçok durumda FISH testleri aslında alternatif tam karyotip analizinden daha da uygundur.
Floresan Hibridizasyonu
Floresan in situ hibridizasyon (FISH), güncel genetik araştırma alanlarında önemli bir rol oynayan güçlü bir tekniktir. Kendileri floresan olan veya immünofloresan mikroskopi ile tespit edilebilen kimyasallarla etiketlenmiş tek sarmallı nükleik asit moleküllerinin (sondalar) belirli hedef nükleik asit dizilerini tanımlamak için kullanıldığı bir dizi ilgili prosedürü ifade eder. Sitolojik preparatlarda da bulunması söz konusu olabilir.
Teknik doğrudan, ilk olarak 1960'larda Speigleman tarafından öncülük edilen ve mikroskop lamları üzerinde sabit materyaldeki nükleik asit dizilerini tanımlamak için radyo-etiketli problar kullanılarak birkaç grup tarafından uyarlanan orijinal nükleik asit hibridizasyon deneylerinden türetilmiştir.
Erken örnekler, Xenopus oositlerinin nükleollerindeki ribozomal RNA genlerinin ve metafaz fare kromozomlarında sentromerik uydu DNA'nın tanımlanmasını içeriyordu. Protokoller o zamandan beri büyük ölçüde gelişmesine rağmen, temel adımlar büyük ölçüde değişmeden kaldı.
Tekniğin tüm varyasyonları, bir nükleik asit probu, bir sitolojik preparasyon ve bir saptama sistemi içerir. Tekniğin varyasyonları ve uygulamaları ile karşılaşılmadan önce sistemdeki temel adımlar bu noktada açıklanacaktır.
Prob Seçimi
Birçok durumda DNA'nın genomik bir klonu kullanılabilir, ancak daha sonra görüleceği gibi, kromozom boyama için başka DNA kaynakları da kullanılabilir. Günümüzde nadiren yapılmasına rağmen bazı uygulamalarda RNA molekülleri kullanılabilir. Prosedür sonunda hibridize materyali tespit etmek için prob kullanımdan önce etiketlenmelidir.
Prob tespitinde bir faktörün bir probun uzunluğu olduğunun farkına varmak önemlidir. Aynı etiketleme ve algılama sistemleri altında, daha küçük bir sonda her zaman daha uzun bir sondadan daha zayıf bir sinyal verecektir.
Bazı durumlarda 500 baz çifti kadar küçük problar saptanabilse de, yaklaşık 40 kb klonlanmış DNA içeren bakteriyofajdan türetilen vektörler olan kozmidler en popüler prob kaynaklarıdır.
Bakteriyel yapay kromozomlar (BAC'ler), P1 yapay kromozomlar (PAC'ler) veya maya yapay kromozomları (YACS'ler) gibi daha büyük ekleri taşıyan vektörlerde klonlanmış DNA, her durumda daha da iyi çalışacaktır.
Polimer Fazlar
Solütlerin ayrıştırıldığı çok küçük hacim, ekstra kolon seyrelmesini ve bant genişlemesini önlemek için ekstra kolon hacimlerinin azaltılmasını gerektirir. Bu, akış hücresinin hacminin geleneksel 5 pm partikül boyutu kolonları ile kullanılandan daha az olması gerektiği ve dolayısıyla kütle tespit edilebilirliğinde bir kayba neden olması gerektiği anlamına gelir.
8 cm X 0.62 cm ID boyutlarına sahip geniş delikli 3 pm partikül boyutu kolonlarının yakın zamanda geliştirilmesinin, dar elüsyon bantları ile ilgili sorunları azalttığı bildirilmiştir ve kolon ölü hacminin sağlanması, hesaplanabilir. 5 pm partikül büyüklüğünde bir kolon ile aynı, bant hacmi benzer olacaktır.
Bu nedenle, enjeksiyon valfi ve detektör arasındaki ölü hacimlerin en aza indirilmesi koşuluyla, geleneksel akış hücreleri (8 ul) ile iyi bir performans elde edilebilir.
Yüksek akış hızlarında termal gradyanların oluşturulması da bant genişlemesine neden olabilir ve 3 pm partikül boyutu kolonları için büyük bir sorun olmaya devam etmektedir. Bildirilen bir çözüm, enjeksiyon valfini ve sütunu farklı sıcaklıklarda tutmaktır; bununla birlikte, özgül sıcaklık farkı mobil faz akış hızına bağlı olacağından, sistem kolayca kurulamaz.
Hava termostatlı geniş çaplı (8 X 0.62 cm), 3 pm partikül büyüklüğündeki kolonların, 10 ml / dk’dan daha düşük akış hızlarında termal gradyanlar nedeniyle yalnızca çok küçük etkiler yaşadığı bildirilmiştir. Bununla birlikte, genel olarak, geleneksel geometrinin 3 pm parçacık boyutu kolonlarında, termal gradyanlar büyük bir problemdir.
Sütun plakalarının (N) sayısı, k’nin etkilenmeden kaldığı koşullar altında bile büyük ölçüde azaltılabilir. Yakın zamanda yapılan bir teorik tedavi, bant genişliğinde% 10’luk bir artış (ve N’de% 20’lik bir azalma) için numune kütlesi M &’nin şu şekilde öngörülebilir olduğu sonucuna varmıştır:
MA: = 2 [(1 + k ’) / k’] ‘W, / N
Burada, tüm numune kütlesi için kapasite faktörü, N, plaka numarasıdır ve W, doygunlukta bir sütun tarafından alınan bir numunenin ağırlığıdır. Bu nedenle, N’nin daha büyük olacağı daha küçük parçacık sütunlarında, bunun daha küçük olacağı açıktır.
Polimer Nedir
Polimer Kimyası PDF
Polimer maddeler
Polimer örnekleri
Polimerler
Kondenzasyon polimerizasyonu
Polimer çeşitleri
Monomer nedir
Bu nedenle, 3 pm’lik bir partikül boyutu kolonuna yüklenebilen numune kütlesi, 5 pm’lik bir partikül ebadı kolonununkinden daha azdır. 8 x 0.62 cm geniş çaplı bir kolon, aynı uzunluktaki 0.46 cm çaplı bir kolonun hacminden 1.8 kat daha büyük bir hacme sahiptir, bu da daha sabit faz, daha büyük bir W bileşeni ve dolayısıyla geliştirilmiş Mi: ile sonuçlanır. Ayrıca, 3 pm parçacık boyutu sütunlarının azaltılmış kütle yüklenebilirliğinin, algılama sınırlarında sorunlara neden olabileceği de kabul edilmelidir.
Tüm mikropartikülat kolonlarında ortak bir problem, partiküllerle tıkanma problemidir ve 5 pm partikül boyutu kolonları ile alınan tedbir prosedürleri, 3 pm partikül boyutu kolonları ile daha da önemli hale gelir.
Bu nedenle, mobil faz ve numuneler filtrelenmelidir (0,32-0,5 pm gözenek boyutu), filtreler de pompa ile enjektör arasında sıralı olarak bulunmalı ve analitik kolondan önce bir koruyucu kolon yerleştirilmelidir. Bu önlemlerin takip edilmesi koşuluyla, 3 pm partikül boyutu kolonları, 5 pm partikül boyutu kolonlarından biraz daha fazla soruna neden olmalıdır.
Parçacık Boyutu ve Şeklinin Diğer Yönleri
Geleneksel tekniklerle paketlenmiş kolonlar için genel olarak, aynı büyüklükteki partiküller için yaklaşık olarak eşdeğer plaka sayılarının küresel ve düzensiz partiküllerle elde edildiği, ancak küresel partikül kolonlarının geçirgenliğinin düzensiz partikül kolonlarının neredeyse iki katı olduğu bulunmuştur.
Bununla birlikte, dikkatli paketleme teknikleri kullanılarak, hem düzensiz hem de küresel parçacık kolonları için eşdeğer geçirgenlikler rapor edilmiştir. Ticari olarak temin edilebilen neredeyse tüm kolon paketleri küresel olduğundan, kolon teknolojisinin bu yönü daha fazla dikkate alınmayacaktır.
Ticari olarak temin edilen bir kolon paketleme materyalindeki partikül boyutu dağılımı sorunu, kendi kolonlarını paketleyen kromatografi yapan kişi için problemler yaratabilir. Kolon boyunca hareketli fazın akış hızı optimum değerlerde tutulursa, büyük bir partikül boyutu dağılımının kolon verimliliği üzerinde hiçbir etkisi yoktur.
Daha yüksek akış hızlarında, kolon verimliliği üzerinde küçük bir olumsuz etki olurken, tüm elüsyon hızlarında geniş bir partikül boyutu dağılımı, kolon geri basıncını ve ayırma empedansını arttırır. Bu nedenle, maksimum etkili bir kromatografik sistem için partikül boyutu dağılımı en aza indirilmelidir.
Gözenek Büyüklüğü
Boyut dışlama etkileri, tüm sıvı kromatografi türlerinde kromatografik parametrelerin ölçümünü etkileyebilir. Büyük numune moleküllerinin giremeyeceği kadar küçük olan ve mobil faz ile dolu olan sabit fazda gözeneklerin varlığı nedeniyle boyut dışlama etkileri meydana gelir.
Hareketli ve sabit fazlar arasındaki denge hızı numune moleküllerinin gözeneklere difüzyon hızına bağlı olduğundan, kolonun verimliliği bu etkilerden açıkça etkilenir.
Durağan fazı oluşturan partiküllere bağlı alkil zincirinin uzunluğu arttıkça, kısıtlı erişim nedeniyle gözeneklere yayılma oranı azalır. Bu nedenle, numune moleküllerinin sabit faza erişiminin boyut dışlama etkileri ortaya çıkmadan maksimize edildiği optimum bir durumun elde edilmesi gerektiği açıktır.
Boyut dışlama etkileri ile ilgili problemler, bir araya gelme eğilimi olan protein ve nükleik asit makromolekülleri ile özellikle önemli hale gelir, bu nedenle sadece boyut dışlama etkilerine değil, aynı zamanda sütunların tıkanmasına da neden olur. Aşırı durumlarda, gözenek çapları en az 50 nm olan sabit fazlar gereklidir.
Ev yapımı kolon ambalajları
Kimyasal olarak bağlı polimer fazlar
HPLC için uygun kimyasal olarak bağlanmış polimer fazlarının üretimi için ticari olarak başarılı yöntemler geniş çapta ilan edilmemiştir ve sadece genel terimlerle belirtilebilir. Bununla birlikte, üretimleri için iki temel yöntem vardır.
İlk olarak, önceden oluşturulmuş bir desteğin modifikasyonu, uygun yerlerin mevcut olması koşuluyla mümkündür. Alternatif olarak, polistiren tipi desteklerde popüler olduğu kanıtlanmış bir yöntem, uygun monomer birimlerinin ko-polimerizasyonu ile gerekli desteği hazırlamaktır.